При ношение катетора появилась кровь

Катетер Сван-Ганца – это специализированное медицинское оборудование, позволяющее оценивать центральную гемодинамику легочной артерии. Исследование выполняется в стационарных условиях и именуется измерение сердечного выбора. Сама аппаратура обладает сложной структурой и высокими требованиями к точности, надежности.

История создания

Разработка специализированного устройства началась в 70-х годах прошлого столетия при этом связывается с именами Гарольд Джереми Сван и Уильямом Ганцем. Именно они предложили проводить катетеризацию легочной артерии. Это оказалось революционным методом мониторинга состояния больных, которые находились в критическом состоянии. Следует отметить, что сама методология обследования начала появляться еще в 50-х. Форма катетера появилась из обычной жизни.

По стечению обстоятельств и при длительной работе удалось выполнить несколько экспериментов. Последние оказались удачными, так как работать с катетером можно было без сопровождения рентгена. Также интересным фактом считается отсутствие осложнений, что стало доказательством эффективности нового метода. С течением времени устройство дорабатывалось и представлено в современном виде. Оно получило улучшенные характеристики безопасности и точности, что является важным при лечении больных.

Показания к использованию

Показания к катетеризации легочной артерии сопряжены со следующими проблемами и нарушениями деятельности организма:

  • Заболевания сердечной мышцы (дисфункция ЛЖ, перенесенный инфаркт, порок сердца, сердечная недостаточность).
  • Заболевания легких (легочная недостаточность, хронические заболевания дыхательной системы).
  • Предоперационный период (коронарное шунтирование, с нарушениями миокарда, операции на сердечный клапан, сложные поражения сердечной мышцы).

Специальный катетер устанавливается и при возрастных ограничениях. При достижении возраста от 65 лет считается необходимостью. Существует необходимость установки оборудования и при проведении других видов операций, к примеру, на аорте. Имеются и ограничения, которые предполагают отказ от применения метода.

Суть методики и клинические возможности

Понятие «термоделюция» в полной мере раскрывает сущность методологии. Основной критерий оценки состояния больного считается температура крови, которая контактирует со специальным термистром. В зависимости от степени колебания температурного режима зависит сердечный выброс. На основании этого выстраивается график на компьютере, что позволяет контролировать состояние больного. Для снижения негативных факторов важно регулировать подачу раствора, а также правильно вводить сам катетер.

Клинические возможности из вышесказанного выражаются в возможности определения индексов выброса крови. Последние свидетельствует о правильности функционирования кровообращения. Без использования метода невозможно правильное воздействие на сократимость миокарда.

Доступность оборудования

Медицинское оборудование от компании «НПП Монитор» представлено в широком многообразии и отличается высоким качеством. Продукция поставляет по всем регионам отечественного государства и за границу. Условия и нюансы прописаны на сайте. Также некоторые моменты можно уточнить по контактным телефонам или через другие средства связи.

Показания к катетеризации легочной артерии сопряжены со следующими проблемами и нарушениями деятельности организма:

Взятие проб крови из постоянных катетеров может привести к сложностям анализа и ошибочным его результатам из-за неполного промывания места взятия. Это приводит к контаминации образца лекарственными средствами, антикоагулянтами и/или разбавлению образца крови.

Поскольку катетеры обычно промываются физиологическим раствором для уменьшения риска тромбоза, их нужно промыть этим раствором и перед взятием проб крови для диагностических исследований. Перед взятием пробы нужно удалить из катетера достаточное количество крови, чтобы быть уверенным, что проба не разбавлена и не контаминирована. Объем удаляемой крови зависит от объема «мертвого пространства» конкретного катетера.

Для исследований, кроме анализа коагуляции, кровь рекомендуется сливать в количестве двух объемов «мертвого пространства» катетера, а для исследования коагуляции — шести объемов «мертвого пространства» катетера (или 5 мл).

Таким образом, в случае, если необходимо взятие крови и на биохимические, и на коагулологические исследования, то первой всегда берется пробирка для биохимических исследований.

При взятии крови из катетера с помощью системы BD Vacutainer® используется адаптер Luer. Техника взятия крови осуществляется также, как и при использовании игл.

Как правильно утилизировать использованную вакуумную систему BD Vacutainer®?

Медицинские отходы очень опасны как для здоровья человека, так и для окружающей среды, и их сбор, хранение и утилизацию необходимо проводить, соблюдая установленные санитарно-эпидемиологические правила и нормы (СанПиН 2.1.7.728-99 «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений») и инструкции, принятые в вашем лечебном учреждении.

Медицинские изделия, применяемые для взятия венозной крови, относятся к медицинским отходам классов Б (опасные отходы) и В (чрезвычайно опасные отходы), в зависимости от того, для какого исследования берется кровь.

Возможные трудности при взятии крови с помощью системы BD Vacutainer®

2. Пробирка не заполнилась до указанного на этикетке объема

При взятии крови из катетера с помощью системы BD Vacutainer® используется адаптер Luer. Техника взятия крови осуществляется также, как и при использовании игл.

АЛГОРИТМ ЗАБОРА КРОВИ НА СТЕРИЛЬНОСТЬ

№ п/п Условия выполнения манипуляций Техника выполнения манипуляции
1. Показания Назначение врача.
2. Противопоказания Отсутствие показаний.
3. Место проведения манипуляции Палата реанимации, ПИТа.
4. Состав бригады, проводящей манипуляцию Медицинская сестра.
5. Спецодежда Медицинский халат, шапочка; смена спецодежды ежедневно, при загрязнении – немедленно.
6. Обработка рук Гигиеническая обработка рук.
7. Использование перчаток Обязательно использование стерильных перчаток.
8. Оборудование 1) Стерильные салфетки, шарики. 2) Стерильный шприц. 3) Спиртовой раствор кожного антисептика для обработки места пункции. 4) Стерильная пробирка для взятия материала.
9. Техника проведения манипуляции 14) Оформите направление в лабораторию. 15) Вымойте руки. 16) Подготовьте необходимое оборудование. 17) Выберите вену. Для забора крови используют любые периферические вены головы и конечностей. 18) Наденьте стерильные перчатки. 19) Обработайте место пункции спиртовым раствором кожного антисептика. 20) Туго натяните кожу для стабилизации вены. 21) Выполните пункцию кожи, затем пункцию боковой стенки вены. Альтернативный метод — одновременная пункция кожи и стенки вены. 22) Осторожно продвиньте иглу до появления в игле крови. 23) Наберите в шприц, соединенный с иглой 2 мл крови. 24) Удалите шприц с иглой из вены. 25) Откройте стерильную пробирку для бак. посева. 26) Не касаясь стенок пробирки, перелейте кровь из шприца в стерильную пробирку. 27) Плотно закройте пробирку. 28) Использованный расходный материал погрузите в емкость для дезинфекции отходов класса Б. 29) Зафиксируйте в истории развития новорожденного дату и время забора. 30) Отправьте кровь в лабораторию.
10. Возможные осложнения 1) Сепсис. 2) Инфекции кровотока (инфекции артерий или вен) риск инфекции можно свести к минимуму, соблюдая стерильность при проведении процедуры. 3) Тромбоз вены не удается избежать особенно при пункции одной и той же вены несколько раз. 4) Гематома или кровотечение после удаления иглы прижмите место пункции на некоторое время для обеспечения гемостаза. 5) Инфекции мягких тканей (некротический фасцилит, инфекционный миозит, лимфаденит, лимфангит, инфильтрат, абсцесс).
11. В т. ч. инфекционные 1) Сепсис. 2) Инфекции кровотока (инфекции артерий или вен). 3) Инфекции мягких тканей (некротический фасцилит, инфекционный миозит, лимфаденит, лимфангит, инфильтрат, абсцесс). Важно! Инфекционные осложнения необходимо зарегистрировать в «Журнале регистрации случаев внутрибольничной инфекции у пациентов» и передать экстренное извещение в Управление Роспотребнадзора по РМЭ.

АЛГОРИТМ ЗАБОРА КРОВИ НА КИСЛОТНО-ЩЕЛОЧНОЕ СОСТОЯНИЕ И ЭЛЕКТРОЛИТЫ

№ п/п Условия выполнения манипуляций Техника выполнения манипуляции
1. Показания Назначение врача.
2. Противопоказания Отсутствие показаний.
3. Место проведения манипуляции Палата отделения реанимации, ПИТ.
4. Состав бригады, проводящей манипуляцию Медицинская сестра.
5. Спецодежда Медицинский халат, шапочка, маска; смена спецодежды ежедневно, при загрязнении – немедленно.
6. Обработка рук Гигиеническая обработка рук.
7. Использование перчаток Обязательно использование стерильных перчаток.
8. Оборудование 1) Туберкулиновый шприц. 2) Шприц 5 мл. 3) Физиологический раствор. 4) Раствор гепарина. 5) Хладоэлемент.
9. Техника проведения манипуляции 1) Оформите направление в лабораторию. 2) Вымойте руки. 3) Обработайте кожным антисептиком. 4) Наденьте стерильный халат, перчатки. 5) Наберите в стерильный шприц 2,0 мл физиологического раствора. 6) Туберкулиновый шприц промойте гепарином. 7) Обработайте переходник пупочного катетера стерильной марлевой салфеткой, смоченной 70% этиловым спиртом. 8) Отсоедините переходник, присоедините шприц с физ. раствором, введите 2,0 мл физ. раствора, затем выведите 2,5 мл содержимого из катетера. 9) Отсоедините промывной шприц; убедитесь, что есть свободный ток крови. 10) Присоедините стерильный туберкулиновый шприц, наберите 0,5 мл крови. 11) Отсоедините туберкулиновый шприц, присоедините переходник катетера к системе для инфузионной терапии. 12) Выпустите воздух из туберкулинового шприца, наденьте колпачок. 13) Положите шприц на хладоэлемент через пеленку и отправьте в лабораторию. 14) Кровь должна быть доставлена в течении 5 минут! 15) Весь отработанный материал поместите в емкость для дезинфекции отходов класса Б. 16) Обработайте руки кожным антисептиком. 17) Зафиксируйте в листе назначений выполнение процедуры.
10. Возможные осложнения 1) Сепсис. 2) Инфекции кровотока (инфекции артерий или вен) риск инфекции можно свести к минимуму, соблюдая стерильность при проведении процедуры.
11. В т. ч. инфекционные 1) Сепсис. 2) Инфекции кровотока (инфекции артерий или вен) риск инфекции можно свести к минимуму, соблюдая стерильность при проведении процедуры. Важно! Инфекционные осложнения необходимо зарегистрировать в «Журнале регистрации случаев внутрибольничной инфекции у пациентов» и передать экстренное извещение в Управление Роспотребнадзора по РМЭ.

АЛГОРИТМ ЗАБОРА КРОВИ ВАКУУМНОЙ СИСТЕМОЙ

АЛГОРИТМ ЗАБОРА КРОВИ НА СТЕРИЛЬНОСТЬ

Взятие проб крови из постоянных катетеров может привести к сложностям анализа и ошибочным его результатам из-за неполного промывания места взятия. Это приводит к контаминации образца лекарственными средствами, антикоагулянтами и/или разбавлению образца крови.

Поскольку катетеры обычно промываются физиологическим раствором для уменьшения риска тромбоза, их нужно промыть этим раствором и перед взятием проб крови для диагностических исследований. Перед взятием пробы нужно удалить из катетера достаточное количество крови, чтобы быть уверенным, что проба не разбавлена и не контаминирована. Объем удаляемой крови зависит от объема «мертвого пространства» конкретного катетера.

Для исследований, кроме анализа коагуляции, кровь рекомендуется сливать в количестве двух объемов «мертвого пространства» катетера, а для исследования коагуляции — шести объемов «мертвого пространства» катетера (или 5 мл).

Таким образом, в случае, если необходимо взятие крови и на биохимические, и на коагулологические исследования, то первой всегда берется пробирка для биохимических исследований.

При взятии крови из катетера с помощью системы BD Vacutainer® используется адаптер Luer. Техника взятия крови осуществляется также, как и при использовании игл.

7. Как правильно утилизировать использованную вакуумную систему BD Vacutainer®?

Медицинские отходы очень опасны как для здоровья человека, так и для окружающей среды, и их сбор, хранение и утилизацию необходимо проводить, соблюдая установленные санитарно-эпидемиологические правила и нормы (СанПиН 2.1.7.728-99 «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений») и инструкции, принятые в вашем лечебном учреждении.

Медицинские изделия, применяемые для взятия венозной крови, относятся к медицинским отходам классов Б (опасные отходы) и В (чрезвычайно опасные отходы), в зависимости от того, для какого исследования берется кровь.

8. Возможные трудности при взятии крови с помощью системы BD Vacutainer®

Задание для самоконтроля № 8
Во время взятия пробы венозной крови в пробирку прекратила поступать кровь. Что произошло? Как вы поступите в данной ситуации?
Ответ [показать]

Читайте также:  Комаровсктйпупок

1. Гудер В. Г., Нарайанан С., Виссер Г., Цавта Б. Пробы: от пациента до лаборатории. Git Verlag, 2001.

2. Инструкция о соблюдении противоэпидемического режима при взятии венозной крови путем венепункции в учреждениях здравоохранения г. Москвы 2.1.3.007-02.

3. Кишкун А. А. Современные технологии повышения качества и эффективности клинической лабораторной диагностики.- М.: РАМЛД, 2005, 528 с.

4. Кишкун А. А. Оценка экономической эффективности использования одноразовых вакуум-содержащих систем для взятия крови на лабораторные анализы / Справочник заведующего КДЛ. — 2006. — N11 (ноябрь). — С. 29-34.

5. Козлов А. В. Стандартизация преаналитического этапа как осознанная необходимость.// Лабораторная диагностика/ под. ред. В. В. Долгова, О. П. Шевченко.-М.: Издательство «Реофарм», 2005 .- С.77-78.

6. Мошкин А. В., Долгов В. В. Обеспечение качества в клинической лабораторной диагностике: Практ. руковод.- М.: «Медиздат», 2004. — 216 с.

7. Обеспечение качества лабораторных исследований. Преаналитический этап. Справочное пособие (под редакцией В. В. Меньшикова), М., Юнимед-пресс, 2003, 311 стр.

8. Приказ МЗ РФ N 380 от 25 декабря 1997 «О состоянии и мерах по совершенствованию лабораторного обеспечения диагностики и лечения пациентов в учреждениях здравоохранения Российской Федерации».

9. Приказ МЗ РФ N 45 от 7 февраля 2000 г. «О системе мер по повышению качества клинических лабораторных исследований в учреждениях здравоохранения Российской Федерации».

10. Приказ МЗ РФ N 220 от 26 мая 2003 г. «Правила проведения внутрилабораторного контроля качества количественных методов клинических лабораторных исследований с использованием контрольных материалов».

11. СанПиН 2.1.7.728-99. «Правила сбора, хранения и удаления отходов лечебно-профилактических учреждений».

12. СП 3.1.958-99. «Профилактика вирусных гепатитов. Общие требования к эпидемиологическому надзору за вирусными гепатитами».

13. Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by venipuncture; Approved Standard- Fifth edition, NCCLS H3-A5 Vol.23, No.32.

14. Procedures for the Handling and Processing of Blood Specimens; Approved Guideline — Third Edition, NCCLS H18-A3 Vol.24, No.38.

15. Single-use containers for venous blood specimen collection ISO 6710:1995.

16. Tubes and Additives for Specimen collection; Approved Standard-Fifth edition, NCCLS H1-A5 Vol.23, No.33.

17. Use of anticoagulants in diagnostic laboratory investigation. WHO/ DIL/LAB/99.1/Rev.2 2002.

Оценить полезность страницы: 12345 *

Оставить письменный отзыв

Форма отзыва не предназначена для получения консультации по личным вопросам.
Желающие получить консультацию могут задать свой вопрос после регистрации на форуме.

Просмотреть отзывы на эту страницу

Можно ли получать пробы крови из центрального венозного катетера?

В связи с повышенным риском инфекции при манипуляциях во время проведения ППП предпочтительно не получать пробы крови из центрального венозного катете­ра. Если все же нужно получить кровь из центрального венозного катетера, возьмите по меньшей мере 5-10 мл, чтобы избежать ошибочных результатов лабораторных анализов. Кровь для посева следует брать с периферии. Если кровь получена из центрального венозного катетера, четко обозначьте на этикетке и направлении «кровь получена из центрального венозного катетера».

Где находятся входные ворота инфекции для микроорганизмов, вызывающих инфекции, ассоциированные с ППП?

Микроорганизмы, вызывающие инфекции, связанные с установкой центрального венозного катетера, могут попадать из инфузионных контейнеров, но наиболее ча­стые места заражения — пробочки трубой, запорные краны, кожа в месте введения, боковые порты и другие инфицированные места организма. Гематогенное обсеме­нение катетера происходит, если организмы из других частей тела фиксируются и размножаются на внутрисосудистой части катетера или на окружающем его фиб-риновом футляре. Борьба с внутрибольничными инфекциями (инфекции мочевы-водящих путей, пневмонии) может также уменьшить число заражений, связанных с катетером.

Превентивные меры включают смешивание ППП опытным фармацевтом в вы­тяжке с ламинарным потоком, соблюдение схем смены контейнеров и трубок и вы­деление отдельного канала центральных венозных катетеров для ППП. Правильное мытье рук невозможно переоценить. Запорных кранов на линиях ППП следует из­бегать, а манипуляции с пробочками сводить к минимуму. Используйте асептиче­ские методы при работе с центральными линиями. Следите за наличием чистой сухой повязки над местом выхода.

Какой метод прекращения ППП самый безопасный?

Хотя исследования не подкрепили существование «гипогликемии отдачи у взрос­лых пациентов, самый безопасный метод прекращения ППП — — плавно свести на ноль скорость инфуаии в течение 2-4 ч. Если ППП резко прервано и имеется озабо­ченность по поводу предупреждения гипогликемии у пациента, надо ввести раствор Ю % глюкозы и определить ее концентрацию в капиллярной крови через 2 ч.

В прошлой статье я обещал рассказать, как БЕЗ ШПРИЦА набирать кровь в вакуумные пробирки из венозных катетеров у пациентов. Чаще всего данные манипуляции необходимы в отделениях реанимации. В настоящее время в подавляющем большинстве медицинских организаций у лежачих пациентов с установленными венозными катетерами (центральными, периферическими), чтобы не производить лишние венопункции, венозную кровь медсёстры набирают сначала в шприц, подсоединяя его к катетеру, а затем переливают кровь в вакуумные пробирки. Это является нарушением методики взятия крови в вакуумные пробирки. В первую очередь, очень сложно избежать гемолиза, так как даже от слабого давления поршня шприца эритроциты лопаются. При этом неважно, со снятой ли крышкой наполняется вакуумная пробирка, то есть самотёком со снятой со шприца иглой, в этом случае давление поршнем всегда есть. Или же резиновую мембрану в крышке закрытой вакуумной пробирки прокалывают иглой шприца, кровь втягивается в пробирку вакуумом, поршень при этом не участвует. Но перед тем, как вынуть иглу из пробки пробирки медсестра, во избежание аэрозольного эффекта, всё-равно немного «поиграет» поршнем шприца вверх-вниз, и в этот-то момент эритроциты и лопаются. Во вторую очередь, при наполнении вакуумной пробирки со снятой крышкой, почти никогда кровь не набирается до метки на этикетке пробирки. Либо кровь ниже метки, либо выше. То есть, не соблюдается соотношение кровь/реагент. В случае с пробиркой для исследования сыворотки крови (с активатором свёртывания) небольшое отклонение от номинального объёма вакуума не так страшно. Но в случае с антикоагулянтами, крови должно быть ровно столько, сколько вакуума в пробирке, ведь реагент рассчитан именно на это количество крови. Нарушение соотношения кровь/реагент искажает результаты анализа, особенно это важно для вакуумных пробирок с раствором цитрата натрия (исследования системы гемостаза, коагулология).

Таким образом, шприц нельзя использовать при взятии крови в вакуумную пробирку. Как же тогда набирать кровь, не совершая лишнюю венопункцию? Для этого существуют луер-адаптеры (люер-адаптеры, кто как привык называть).

Луер-адаптер для взятия венозной крови

Такой адаптер вкручивается в держатель (иглодержатель, переходник, холдер):

Держатель с вкрученным луер-адаптером присоединяется к венозному катетеру и кровь набирается как через обычную двустороннюю иглу. Правда в этом случае есть одно НО! Первая пробирка с образцом крови, разбавленным лекарственными средствами, гепарином или физраствором, должна в обязательном порядке утилизироваться. И только вторая пробирка с чистой пробой крови идёт в лабораторию на исследования. Многие скажут — это же перерасход пробирок и, соответственно денежных средств на их закупку! Но кто-то из возражающих пытался подсчитать, чем оборачиваются ситуации, когда десятки и сотни пробирок с гемолизом (набранных шприцом) просто выбраковываются лабораторией и кровь нужно брать повторно в новые вакуумные пробирки? А если в лабораторию поступают пробирки с разбавленными пробами крови? Во что в таких случаях обходится неверная постановка диагноза, неверно назначенное лечение, мучения пациентов, лишние койко-дни, если уж речь заходит и об экономической целесообразности, а не только о качестве лечения? Поэтому на качественной диагностике, с которой начинается лечение, экономить вообще не стоит, тем более в мелочах, типа луер-адаптера.

В следующей статье подробно расскажу о том, можно ли для исследований сыворотки крови (биохимия, серология) выбирать вакуумные пробирки пустые, «без добавок», «без наполнителей»? Или всё же необходимы пробирки с активатором свёртывания?

Как оказалось мы теперь должны работать по
ГОСТ Р 53079.3-2008 «Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований».

3.2. Требования к условиям и процедурам взятия
образца биологического материала

Взятие образца или пробы — это процесс изъятия или образования проб, охарактеризованный процедурой их взятия, то есть оперативными требованиями и/или инструкциями для отбора, изъятия и подготовки одной или нескольких проб из инспектируемого лота для выяснения характеристик этого лота (в лабораторной медицине инспектируемый лот — это обследуемый пациент, а образцы или пробы — это порции того или иного биологического материала).
3.2.1. Биологический материал — кровь
Большая часть клинических лабораторных исследований проводится в образцах крови: венозной, артериальной или капиллярной. Венозная кровь — лучший материал для определения гематологических, биохимических, гормональных, серологических и иммунологических показателей.
Для исследования аналитов в цельной крови, сыворотке или плазме образец крови берут чаще всего из локтевой вены.
Показания для взятия крови из пальца на клиническое исследование крови:
— при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента;
— при наличии у пациента очень мелких вен или когда они труднодоступны;
— при выраженном ожирении пациента;
— при установленной склонности к венозному тромбозу;
— у новорожденных.

При взятии образца крови из венозного или артериального катетера, через который проводилось вливание инфузионного раствора, катетер следует предварительно промыть изотоническим солевым раствором в объеме, соответствующем объему катетера, и отбросить первые 5 мл (миллилитров) взятой из катетера крови. Недостаточное промывание катетера может привести к загрязнению образца крови препаратами, вводившимися через катетер. Из катетеров, обработанных гепарином, нельзя брать образцы крови для исследований системы свертывания крови.

3.2.3. Биологический материал — моча
В зависимости от цели исследования образцы мочи собирают либо в виде отдельных порций, либо за определенный промежуток времени. Первая утренняя порция мочи (натощак, сразу после сна) используется для общего анализа, вторая утренняя порция мочи — для количественных исследований в соотношении с выделением креатинина и для бактериологического исследования, случайная порция — для качественных или количественных клинико-химических исследований, суточная моча — для количественного определения экскреции аналитов.
Желательно использовать сосуд с широкой горловиной и крышкой, по возможности надо собирать мочу сразу в посуду, в которой она будет доставлена в лабораторию. Мочу из судна, утки, горшка брать нельзя, так как даже после прополаскивания этих сосудов может сохраняться осадок фосфатов, способствующих разложению свежей мочи. Если в лабораторию доставляется не вся собранная моча, то перед сливанием ее части необходимо тщательное взбалтывание, чтобы осадок, содержащий форменные элементы и кристаллы, не был утрачен.
При взятии утренней мочи (например, для общего анализа) собирают всю порцию утренней мочи (желательно, чтобы предыдущее мочеиспускание было не позже, чем в два часа ночи) в сухую, чистую, но не стерильную посуду, при свободном мочеиспускании. При сборе суточной мочи пациент собирает ее в течение 24 ч на обычном питьевом режиме (1,5 — 2 л (литра) в сутки). Утром в 6 — 8 ч он освобождает мочевой пузырь (эту порцию мочи выливают), а затем в течение суток собирает всю мочу в чистый сосуд с широкой горловиной и плотно закрывающейся крышкой, емкостью не менее 2 л. Последняя порция берется точно в то же время, когда накануне был начат сбор (время начала и конца сбора отмечают). Если не вся моча направляется в лабораторию, то количество суточной мочи измеряют мерным цилиндром, отливают часть в чистый сосуд, в котором ее доставляют в лабораторию, и обязательно указывают объем суточной мочи.
Если для анализа требуется собрать мочу за 10 — 12 ч, сбор обычно проводят в ночное время: перед сном больной опорожняет мочевой пузырь и отмечает время (эту порцию мочи отбрасывают), затем больной мочится через 10 — 12 ч в приготовленную посуду, эту порцию мочи доставляют для исследований в лабораторию. При невозможности удержать мочеиспускание 10 — 12 ч, больной мочится в приготовленную посуду в несколько приемов и отмечает время последнего мочеиспускания.
При необходимости сбора мочи за два или три часа, больной опорожняет мочевой пузырь (эта порция отбрасывается), отмечает время и ровно через 2 или 3 часа собирает мочу для исследования.
При проведении пробы трех сосудов (стаканов) собирают утреннюю порцию мочи следующим образом: утром натощак после пробуждения и тщательного туалета наружных половых органов больной начинает мочиться в первый сосуд, продолжает во второй и заканчивает — в третий. Преобладающей по объему должна быть вторая порция. При диагностике урологических заболеваний у женщин чаще используют пробу двух сосудов, то есть делят при мочеиспускании мочу на две части; важно, чтобы первая часть в этом случае была небольшой по объему. При проведении пробы трех сосудов у мужчин последнюю третью порцию мочи собирают после массажа предстательной железы. Все сосуды готовят предварительно, на каждом обязательно указывают номер порции.

Читайте также:  38 Недель Ребенок Больно Шевелится И Упирается В Дно

Однако! Где-нибудь еще учат собирать среднюю порцию мочи для общего анализа? Или везде уже учат по новому?

Оставить письменный отзыв

В отделениях интенсивной терапии или реанимационных отделениях час-то бывает невозможно пунктировать вену пациента. В случае, если у пациента стоит центральный катетер, иногда, при соблюдении определенных правил зa6opa, можно использовать для исследования кровь, полученную из центрального катетера.

Однако, исследование крови из центрального катетера должно проводиться только в исключительных случаях. На результаты тестов может влиять множество факторов, особенно мертвое пространство внутри катетера с возможным стазом крови, активация свертывания на стенке катетера, примене­ние различных инфузионных растворов и использование гепарина для пре­дотвращения контактной активации и поддержания проходимости катетера.

Если необходимо забрать кровь из центрального катетера, не имеющего контаминации гепарином, достаточно «выбросить» первые 10 мл крови. Результаты, полученные из последующих порций цитратной крови , достаточно стабильны и сравнимы с результатами, полученными из крови переферической вены.

В случае же контаминации гепарином, сброс даже первых 20 мл крови может быть недостаточным для получения надежных результатов гепарин-зависимых тестов (АПТВ, ТВ). 1

Если нельзя избежать использования крови из центрального катетера,

можно рекомендовать для забора следующую процедуру:

· Сбросить первые 10-20 мл крови, или использовать эту кровь для других ви­дов исследований.

· Приоритет в коагуляционных тестах должны получать гепарин-независимые те­сты (ПВ, рептилазное время, фибриноген, фибрин-мономер, антитромбин III)

· Не выполнять гепарин-зависимые тесты в течение нескольких часов после инъекции гепарина в катетер, или добавления гепариназы в образец плазмы.

3.10. ЧТО ИМЕЕТСЯ В ВИДУ ПОД ПРЕДАНАЛИТИЧЕСКОИ СТАДИЕЙ И НА КАКИЕ ПОТЕНЦИАЛЬНЫЕ ИСТОЧНИКИ ОШИБОК НУЖНО ОБРАТИТЬ ОСОБОЕ ВНИМАНИЕ ВО ВРЕМЯ ПРЕДАНАЛИТИЧЕСКОИ СТАДИИ В КОАГУЛЯЦИОННЫХ ИССЛЕДОВАНИЯХ?

Преданалитическая стадия общее понятие, относящееся ко всем про­цессам, происходящим непосредственно перед лабораторным анализом. Условия, в которых находится исследуемый образец до непосредственного вы­полнения теста, оказывают решающее влияние на надежность результатов теста

Влияющие факторы могут присутствовать на следующих этапах

• метод забора, включая жгут (3.12)

• место венепункции (3 5, 3.8, 3.9)

• добавление антикоагулянта (3.4, 3.9, 3.13)

2. Транспортировка и хранение образцов

• распределение по аликвотам

• специальная обработка (замораживание/оттаивание, добавки)

Определяющими факторами являются:

• биоритмы (например день/ночь, 3.17)

• этнические и географические особенности

• физический и эмоциональный стресс (3.18)

• стимулянты (кофе, чай и др), лекарства (3.19)

Забор, транспортировка, хранение и обработка образцов критичны для надежности и качества результатов коагуляционных тестов Знание этих влияющих факторов необходимо для правильной интерпретации результатов теста.

3.11. какое ВЛИЯНИЕ НА РЕЗУЛЬТАТЫ ТЕСТА ИМЕЕТ ПОЛОЖЕНИЕ ТЕЛА?

Положение тела влияет на состав крови , т.е. на количество форменных элементов, концентрацию белков и белок связанных веществ Это явление особенно наблюдается у больных с отеками (аккумуляция жидкости в тканях).

Уровень всех этих параметров почти всегда выше в крови «стоящих» пациентов. В вертикальном положении форменные элементы и белки крови Ч сконцентрированы, т. к. жидкость «выдавливается» из кровеносных сосудов в окружающие ткани. Рефлюкс жидкости из тканей в кровоток у пациентов, на холящихся в горизонтальном положении ведет, к «разведению» крови. Это эффект наиболее заметен у больных с отеками. У здоровых лиц значения от дельных параметров могут падать примерно на 20% по сравнению с их же величинами в вертикальном положении, у больных с отеками такое падение может быть больше.

Уровень фибриногена у 2 человек в различном положении:

Фибриноген, г/л
Человек Вертикальное положение После 8 часов в постели После 1 часа в вертикальном положении
1.78 1.65 1.76
2 3.28 2.81 3.30

Уровень активности антитромбина III в различных положениях у 5 человек.

Для получения сравнимых результатов, образцы крови для мониторинга должны всегда забираться при одном и том же положении тела.

!3.12. влияет ЛИ НАЛОЖЕНИЕ ЖГУТА НА РЕЗУЛЬТАТЫ КОАГУЛЯЦИОННЫХ ТЕСТОВ?

Цель наложения жгута при заборе крови предотвратить обратный ток венозной крови при сохранении кровотока в капиллярах. Это значит, что давление жгута (манжеты) должно быть ниже диастолического кровяного давления, но выше давления в переферических венах, т. е. примерно на 10 мм Hg : ниже диастолического кровяного давления . Если стаз длится слишком долго или применено слишком большое давление, это может вести к местной активации фибринолиза и к возрастанию активности факторов свертывания.

В первые 30 секунд после наложения венозной манжеты не обнаружено е какого-либо влияния на результаты скрининговых тестов или на активность отдельных факторов.

После стаза длительнее 3 минут обнаружены следующие статистически значимые изменения:

• уменьшение протромбинового времени, АПТВ и тромбинового времени

• увеличение примерно на 10% уровня фибриногена, антитромбина III и других факторов

• увеличение в среднем на 20% фактора VIII:C, в некоторых случаях увеличе­ние может быть существенно большим.

Длительность стаза должна проверяться в тех случаях, когда наблюдают­ся колебания результатов у пациента.

3.13. почему НЕВЕРНОЕ СООТНОШЕНИЕ КРОВЬ /ЦИТРАТ ВЛИЯЕТ НА РЕЗУЛЬТАТЫ ТЕСТА?

Часто исследуемые образцы не содержав точного соотношения кровь / цитрат 10:1. В случае забора бабочкообразной иглой такое возможно при до­бавлении слишком большого или слишком малого количества крови в пробир­ку, уже содержащую цитрат; в случае использования Моноветтов или Ваку-тейнеров такое возможно только в случае взятия слишком малого объема крови

Значения протромбинового времени и АПТВ, полученные при различном со­отношении кровь/цитрат (среднее для 20 образцов, 0.105М цитрат натрия)

Основная причина разницы полученных результатов — разница в конечной концентрации цитрата и разведении плазмы.

Добавление слишком большого объема крови (разведение > 1:12), которое ведет к низкой концентрации цитрата в плазме, может также вести к активации свертывания, что проявляется в укорочении времени свертывания или появлении в плазме фибрин-мономеров или даже сгустков.

Практически отсутствует влияние при разведениях от 1:9 до 1:12, т.е. при добавлении в пробирку 1 мл цитрата, в нее может быть добавлено от 8 до 11 мл крови.

Добавление слишком малого количества крови ведет к увеличению концентрации цитрата в плазме и большому разведению плазмы. Это может дать патологические результаты в виде удлиненных времен свертывания как ре­зультат сравнительно низкого содержания кальция в стандартных коагуляционных реагентах и из-за разведения всех компонентов плазмы, включая факторы свертывания. В рутинных лабораторных условиях можно применять следующее правило:

для работы в области возможных колебаний от нормального соотношения 1:10, пробирка на 10 мл должна содержать минимум 8 мл крови, а пробирка на 5 мл — 4 мл цитратной крови.

3.14. почему ПЕРЕД ВЫПОЛНЕНИЕМ КОАГУЛЯЦИОННЫХ ТЕСТОВ НЕОБХОДИМА ТЩАТЕЛЬНАЯ ПРОВЕРКА ОБРАЗЦОВ КРОВИ ИЛИ ИССЛЕДУЕМЫХ ОБРАЗЦОВ?

Аккуратная проверка образцов крови перед их дальнейшей обработкой позволяет избежать многих ошибок, связанных с забором. Образцы, где выявлены такие крупные нарушения технологии забора, должны быть отброшены.

Крупные нарушения включают в себя:

Неправильное соотношение кровь/цитрат. Это можно увидеть, если объем крови в пробирке меньше, чем требуемый. При тестировании таких образцов наблюдается ложное удлинение времен свертывания из-за преданалитической ошибки. При использовании забора с помощью бабочкообразной иглы, объем крови может быть также слишком большим.

Частично свернувшиеся образцы. Для них характерно наличие сгустков разного размера. В зависимости от степени свертывания, время свертывания может быть ложно укорочено, нормально или удлинено. Наибольшую важность имеет понимание того факта, что даже в самом начале процес­сов свертывания, когда нельзя обнаружить видимых сгустков, но уже имеет место активация факторов сверывания, будут получены неверные результаты.

Гемолиз. Может наблюдаться после длительного хранения неотцентрифугированных образцов в вертикальном положении, а также после центрифугирования. В таких образцах результаты варьируют в зависимости от степе ни гемолиза. В определенных обстоятельствах могут использоваться и гемолизированные образцы. Если гемолиз присутствует и in vivo, что подтвер­ждается взятием нового образца, образец может быть тестирован для оценки существующей гемостазиологической ситуации. Однако, если ге­молиз происходит во время или после забора пробы, например, как результат избыточно сильной аспирации, слишком энергичного перемешивания или за счет контаминации гемолизирующими веществами, такой образец должен быть отброшен. В отношении эктеричных или липемичных плазм должны применяться те-

же ограничения и учитываться те же возможные влияния, как и большинст­ва биохимических тестов.

3.15. какова СТАБИЛЬНОСТЬ ФАКТОРОВ СВЕРТЫВАНИЯ ПРИ РАЗЛИЧНОЙ ТЕМПЕРАТУРЕ?

Стабильность отдельных факторов свертывания в образце нитратной кро­ви или плазмы различна. Кроме длительности хранения, важную роль играет температура хранения

Скрининговые тесты (среднее для 20 образцов

После хранения 8 часов при
Сразу после центрифугирования 20°С 37°С
ПВ (%%)
АПТВ (сек) 35,5 40,6 48,0

При комнатной температуре протромбиновое время более стабильно, чем АПТВ, увеличение температуры ведет к снижению ПВ и пролонгации АПТВ. Эти изменения происходят за счет изменения активности отдельных факторов.

Активность отдельных факторов (среднее для 20 образцов)

После хранения 8 часов при
Сразу после центрифугирования 20°С 37°С
V (%%)
VII (%%)
VIII (%%)
IX (%%)

VII фактор крайне нечувствителен к времени и температуре хранения, что в прошлом дало ему имя «стабильного» фактора. Наиболее лабильным факто­ром является VIII, а не V фактор, имевший в прошлом название «лабильного» Быстрая инактивация V фактора происходит только при высоких температу­рах Остальные факторы показывают медленное снижение активности, по­добно IX фактору.

Для стабилизации результатов должны применяться следующие правила Температурные режимы:

• если образец предполагается исследовать в ближайшее время , его можно оставить при комнатной температуре в отцентрифугированном виде. Если плазма перенесена во вторичную пробирку, то она должна быть закрыта. чтобы не допустить изменения рН за счет испарения:

• необходимо избегать повышенных температур, включая прямой солнечный свет

• хранение в холодильнике (+4 С) небезразлично, т к. может вести к холодо-вой активации VII, XI, XII факторов и укорочению времен свертывания.

• если образец предполагается исследовать когда то, бестромбоцитная плазма распределяется по аликвотам и замораживается в закрытых пробирках Для краткосрочного хранения достаточно замораживания при 20 С, для долгосрочного требуется, по крайней мере, 70°С. Для очень длительного хранения требуется замораживание в жидком азоте (-196 С) Заморожен­ные образцы должны оттаивать в водяной бане при +37 С. Необходимо об­ратить особое внимание на окончательное растворение криопреципитатов Анализ должен проходится немедленно после оттаивания, так как эта (про­цедура снижает активность многих факторов Не допускается повторное замораживание / оттаивание.

Длительность хранения:

• Если образец предполагается исследовать сразу, скрининговые тесты должны быть выполнены в течение 4 часов после взятия крови. Это также применимо к исследованиям отдельных факторов, в особенности VIII, который должен быть определен в течение 2 часов после взятия крови.

Читайте также:  Как Лежит Ребенок В Животе На 38 Неделе Когда Мама Спит На Боку

• Различные реакции и исследования факторов могут быть выполнены после длительного периода хранения. Это включает в себя Hepato Quick, II, VII, X факторы, кофактор ристоцетина, антитромбин III, протеин С и т.д. Каждая лаборатория должна выработать свой собственный подход к хранению та­ких образцов и выполнению таких исследований

• Если образцы предполагается анализировать когда-то, должна быть заморо­жена бестромбоцитная плазма. В настоящее время нет надежных данных по стабильности различных факторов в замороженном состоянии VIII фактор должен быть определен в течение 2 недель при хранении при -20 С, при -70°С допустимо хранение до 1 года при 196 С стабильность практи­чески неограничена.

Необходимо обратить внимание на следующие моменты:

• при замораживании / оттаивании идентичные результаты наблюдаются только в случае, если плазма не содержит фибрин-мономеров, ПДФ и гепарина

• в плазме, содержащей фибрин мономер, процессы гелеобразования после оттаивания могут вести к отрицательным результатам на фибрин-мономер и к удлинению АПТВ, тромбинового и рептилазного времени.

• В плазмах со значительно удлиненным тромбиновым временем (гепарин, ПДФ) нестабильность после оттаивания может вести к укорочению тромбинового времени и АПТВ.

3.16. влияет ЛИ ВЕЛИЧИНА ГЕМАТОКРИТА

НА РЕЗУЛЬТАТЫ КЛОТТИНГОВЫХ ТЕСТОВ?

Величина гематокрита (Hct) между О 25 и 0.55 (25-55%) не оказывают су­ществен­но­го влияния на результаты скрининговых тестов. Таким образом, в

большинстве случаев значением гематокрита можно пренебречь.

Высокий гематокрит наблюдается у новорожденных, а также при заболе­ваниях, ассоциированных с увеличением количества форменных элементов (полицитемия, заболевания сердца). В таких ситуациях, если гематокрит боль­ше 0.55, при обычном методе забора крови (9 частей крови на 1 часть цит рата) будут наблюдаться неверные результаты, несмотря на то, что соблюде­но соотношение кровь/цитрат.

Схематическое распределение объемов в образце с нормальным и увеличенным гематокритом.

Малые количества плазмы в образце с высоким гематокритом неизбежно ведут к колебаниям в концентрации цитрата и различному разведению плазмы раствором цитрата. Все вместе это дает ложные результаты теста.

При превышении значений гематокрита 0.55, отношение кровь/цитрат должно быть скорректировано. Количество крови, которое необходимо взять, может быть рассчитано по следующей формуле:

9 х объем цитрата, мл х0,55/(1-patientHct)

Например. Hot пациента 0.8:

Объем крови = 9 х 1мл х 0.55/(1-0.8) = 24,75 мл., т.е. к 1 мл. цитрата должно

быть добавлено 24,75 мл венозной крови.

Если гематокрит меньше 0.25 (25%), отношение должно также быть скорректировано. Объем крови рассчитывается таким же образом, как и для повышенного гематокрита.

Коммерческие системы забора с фиксированным отношением кровь/цитрат не могут быть использованы в этих целях.

Уровень активности антитромбина III в различных положениях у 5 человек.

Катетер для выведения мочи

Многие годы пытаетесь вылечить ПОЧКИ?

Глава Института нефрологии: «Вы будете поражены, насколько просто можно вылечить почки просто принимая каждый день.

В практике врача урологического профиля довольно часто приходится сталкиваться с таким устройством, как катетер для мочи. Он представляет собой резиновую трубку или систему, состоящую из нескольких трубок, необходимую для введения в просвет мочевого пузыря, если у пациента по тем или иным причинам не идет моча или для других диагностических целей.

Наиболее часто в катетеризации нуждаются мужчины, у которых наблюдаются такие заболевания, как аденома предстательной железы или ее злокачественное перерождение (рак простаты). На их фоне происходит нарушение проходимости мочеиспускательного канала, что ведет за собой задержку мочи.

Что такое катетеризация мочевого пузыря?

Основная цель катетеризации – восстановление нормального оттока мочи из просвета мочевого пузыря, что нормализует все процессы уродинамики, и предотвращает ряд опаснейших осложнений для жизни больного.

Для лечения почек наши читатели успешно используют Ренон Дуо. Видя, такую популярность этого средства мы решили предложить его и вашему вниманию.
Подробнее здесь…

Катетер вводится в наружное отверстие уретры, после чего постепенно продвигается по мочеиспускательному каналу и достигает просвета мочевого пузыря. Появление мочи в катетере – свидетельство того, что процедура выполнена правильно и успешно.

При выполнении катетеризации мочевого пузыря, важно соблюдать ряд следующих основных условий:

  • введение катетера в мочевыводящий канал (уретру) должно производиться осторожно, без применения грубости и насилия;
  • процедура начинается с применения эластичных устройств (катетера типа Тимана или Мерсье);
  • для того чтобы минимизировать возможное повреждение стенок уретры, необходимо использовать катетер большого диаметра;
  • пациенту вставляют металлический катетер только в том случае, если врач, который проводит манипуляцию, в совершенстве обладает этим навыком;
  • при появлении любых болевых ощущений в процессе катетеризации, ее необходимо прекратить, а больного немедленно госпитализировать в стационар;
  • если у пациента имеется острая задержка мочи, но введение катетера в мочевой пузырь невозможно (имеются противопоказания), то прибегают к чрезкожной цистостомии.

Разновидности катетеров и их классификация

Ранее для проведения катетеризации использовались только металлические (жесткие) катетеры, которые приводили к частым осложнениям (травмы слизистых, разрывы и т.д.). В настоящее время распространенность получили силиконовые (мягкие) и резиновые (эластичные) устройства разных диаметров.

Применяют следующие виды устройств:

  • катетер Нелатона (используется для катетеризации на короткий промежуток времени, с целью единовременного дренажа);
  • катетер Фолея (вводится на продолжительный промежуток времени, имеет несколько ходов, через которые одновременно производится введение лекарственных средств и выведение мочи);
  • стент Тимана (устройство, используемое урологами при болезнях предстательной железы, хорошо принимает изгибы мочеиспускательного канала).

Техника выполнения процедуры

Для того чтобы провести процедуру катетеризации, в соответствии со всеми правилами асептики и антисептики, необходимо проводить ее в условиях специализированного стационара, с использованием современных антисептических средств, стерильных устройств, медицинских одноразовых перчаток и т.д.

Катетеризация мочевого пузыря у женщины

Алгоритм проведения манипуляции следующий:

  • Женщину укладывают на спину, просят ее согнуть ноги в коленях и развести их сторону.
  • Производят тщательную обработку женских половых органов с использованием антисептических растворов, после чего входное отверстие влагалища обкладывается стерильными салфетками.
  • Правой рукой вводится хорошо смазанный катетер для мочи, до ее появления (примерно на 4-5 см).
  • Если моча внезапно перестала вытекать, то это может свидетельствовать о том, что устройство уперлось в стенку пузыря, поэтому необходимо немного оттянуть катетер назад.
  • После окончания манипуляции, и полного оттока урины, необходимо аккуратно вывести катетер наружу, а просвет уретры вновь обработать раствором антисептика.
  • Пациентке требуется в течение часа находиться в горизонтальном положении.

В период беременности возникают ситуации, когда женщине требуется катетеризация, например, при продвижении конкремента, и закупорка им просвета мочевыводящих путей, что приводит к острой задержке мочи, а также перед предстоящим кесаревым сечением.

Катетеризация мочевого пузыря у мужчины

У мужчин проведение катетеризации усложняет анатомическое строение уретры, а именно ее небольшой диаметр, значительная протяженность, извитость и наличие физиологических сужений.

Алгоритм проведения процедуры следующий:

  • Мужчину укладывают на спину (ноги сгибать в коленях не надо).
  • Половой член и паховая область обкладываются стерильными салфетками по всему периметру.
  • Левой рукой врач оттягивает назад крайнюю плоть, обнажая при этом просвет уретры, и одновременно вытягивает половой член перпендикулярно поверхности туловища больного. Головка пениса и другие мужские половые органы тщательно обрабатываются антисептическими растворами.
  • Предварительно смазанный катетер вводится правой рукой, все движения должны быть плавными и равномерными, при этом врач должен прикладывать лишь небольшое усилие в местах анатомических сужений (пациента при этом просят максимально расслабиться).
  • Рекомендована периодическая пальпация кончика катетера, особенно если на его пути встречаются препятствия, до тех пор, пока через него не пойдет моча (свидетельство того, что он достиг просвета мочевого пузыря).
  • Когда процедура будет окончена, катетер выводят, а просвет уретры повторно обрабатывают раствором антисептика. Больному требуется в течение часа находиться в горизонтальном положении.

Катетеризация мочевого пузыря у ребенка

В целом техника проведения катетеризации у детей не имеет существенных отличий от процедуры, выполняемой у взрослых. Ее проводят с целью восстановления нормального оттока мочи, и ликвидации всех признаков острой задержки урины.

Введение катетера ребенку требует особенной бережности и аккуратности, так как у них высок риск повреждения слизистых оболочек, вплоть до полного разрыва стенки уретры или мочевого пузыря. Вот почему для катетеризации детей применяют устройство меньшего диаметра, а если существует такая возможность, то процедуру проводят под ультразвуковым или рентгенологическим контролем.

Показания и противопоказания для выполнения процедуры

Основные показания для катетеризации мочевого пузыря:

  • развитие острой задержки мочи при разных патологических состояниях;
  • хроническая задержка урины в просвете мочевого пузыря;
  • шоковое состояние больного, при котором отсутствует возможность самостоятельного отхождения мочи;
  • необходимость определения точного объема суточной мочи у пациентов, находящихся в отделении реанимации или интенсивной терапии;
  • определение того объема мочи, который остается у больного после акта мочеиспускания;
  • введение веществ-контрастов (требуется при цистоуретрографическом исследовании);
  • промывание просвета мочевого пузыря растворами антисептиков или антибиотиков;
  • с целью удаления кровяных сгустков из пузыря;
  • проведение ряда диагностических процедур (например, взятие анализа мочи для дальнейшего ее посева на питательные среды, когда сдача естественным путем невозможна или затруднена).

Противопоказанием для катетеризации у мужчин и женщин могут служить следующие патологические процессы:

  • воспалительный процесс в тканях предстательной железы (острый простатит или обострение его хронической формы);
  • воспалительный процесс в яичках или их придатках;
  • абсцессы простаты или другие объемные образования в ней, приводящие к резкому сужению просвета уретры, когда введение катетера невозможно;
  • инфекция мочеиспускательного канала (острый уретрит или обострение хронического процесса, когда резко выражен отечный компонент);
  • травматическое повреждение уретры или резкая ее деформация на фоне стриктур (введение катетера может повлечь за собой разрыв стенки уретры);
  • выраженный спазм наружного сфинктера пузыря (например, на фоне нарушенной иннервации при повреждении поясничного отдела позвоночника);
  • контрактура шеечной части мочевого пузыря.

Осложнения после манипуляции

Как правило, если катетеризация выполняется опытным специалистом, а у пациента отсутствуют какие-либо патологические процессы, затрудняющие продвижение катетера по уретре, то осложнения встречаются довольно редко.

Наиболее распространенными считаются следующие неблагоприятные исходы от процедуры:

  • повреждение стенок уретры или мочевого пузыря, что приводит к появлению в моче крови (гематурия);
  • случайный разрыв стенки мочеиспускательного канала или перфорация пузыря (это происходит при грубом введении катетера);
  • инфицирование уретры или мочевого пузыря (развивается цистит или уретрит);
  • резкое снижение цифр артериального давления (гипотензия на фоне манипуляции).

Замена катетера или его удаление

Если катетеризация мочевого пузыря производится на длительный промежуток времени, то нередко возникает необходимость замены устройства. Это происходит при следующих ситуациях:

  • изначально неправильно подобранный размер катетера, вследствие чего наблюдается постепенное «подтекание» мочи;
  • засор просвета устройства;
  • появление выраженных спазмов у больного или других неприятных ощущений, требующих временного выведения катетера.

Удалением устройства, как и его введением, должен заниматься только специалист с медицинским образованием, чтобы предотвратить любых осложнений. Врач отсоединяет резервуар с мочой от основной трубки. С помощью большого шприца, присоединенного к наружному отверстию трубки, выводится остаточный объем мочи, далее катетер удаляется полностью. Все движения должны быть плавными и острожными, нужно избегать каких-либо «рывков».

Заключение

Катетеризация мочевого пузыря – манипуляция, которая требует вмешательства только специалиста с медицинским образованием.

Каждый пациент, которому установлен катетер, требует постоянного наблюдения. При появлении любых неприятных симптомов, необходима диагностика этого состояния, а вопрос его удаления решается только врачом.

При выполнении катетеризации мочевого пузыря, важно соблюдать ряд следующих основных условий:

Давайте будем совместно делать уникальный материал еще лучше, и после его прочтения, просим Вас сделать репост в удобную для Вас соц. сеть.

Оцените статью
Помогаем при ведении беременности советом — есть вопросы? Задавайте